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麻醉小鼠后，用溫水（但水溫不要過(guò)高）擦拭尾巴，引起輕微的血管擴張。

用無(wú)菌手術(shù)刀、刀片或鋒利的剪刀，快速截斷小鼠尾尖0.5-1cm。如果需要多次采血，之后每次僅需截除2-3mm。

可以從尾部向尾尖方向按摩，以增加血流（但是，這會(huì )降低血樣的質(zhì)量，增加溶血的風(fēng)險）。也可以用毛細采血管收集血液，或直接滴入收集管中。采血結束后，按壓傷口或使用止血劑（如硝酸銀，6%液體火棉膠）來(lái)止血。每次采血量大約可達0.1ml。

優(yōu)點(diǎn)：眼眶后靜脈叢采血法方法簡(jiǎn)單，便于掌握。血流較快，采血量多，能在較短時(shí)間內采約0.5mL血。傷口較小，愈合較快。成功率高，死亡率低。

缺點(diǎn)：不能避免組織液的混入，對于血樣要求較高的研究應謹慎使用。

小鼠經(jīng)氣體麻醉后，左手拇指及食指壓迫小鼠的頸部?jì)蓚?，阻礙靜脈回流，使眼球充分外突，提示眼眶后靜脈叢充血。也可以將小鼠放置在側臥位，拇指與食指分別置于小鼠頭頂和下頜，將皮膚向后及向下拉。抓握時(shí)要避免對氣管施壓，否則可能會(huì )影響小鼠呼吸。

將毛細采血管（建議采用0.5*100mm規格的毛細管，在使用前折成小段，每段大約3-4cm）置于內側眼角處，并且以與鼻翼平面成30-45度沿內眥插入內眼角，滑入眼球后方，輕輕向眼底方向刺入。

當感到有阻力時(shí)即輕輕旋轉采血管的同時(shí)施加壓力以切開(kāi)靜脈叢，血液將通過(guò)毛細作用流入采血管。不能刺地過(guò)深，一般2-3mm即可。

采血結束后，立即松開(kāi)手指對小鼠的壓迫，使眼球復位，同時(shí)將采血器拔出?？捎酶擅耷驂鹤⊙劭?，確保止血。一般眼眶靜脈叢采血量可以達到0.2-0.3ml。

綁定小鼠，可將小鼠側臥，使小鼠頭部盡量固定。在小鼠嘴角沿線(xiàn)與外眼角線(xiàn)橡膠處找到頜下靜脈的大致位置，會(huì )發(fā)現一個(gè)無(wú)毛的小點(diǎn)，有點(diǎn)像酒窩，基本位于嘴角遠端稍低于下巴線(xiàn)。

針保持垂直于皮膚表面，刺入皮膚。深度不超過(guò)針頭的斜面（約3mm）。拔出針頭后，血液就會(huì )流出。為方便采血，可使小鼠頭部低于心臟高度。采血結束后，按壓以止血。一般采血量為0.2-0.5ml。

將小鼠置于固定管或架中，但保持后腿可自由活動(dòng)，剃除跗部的毛。為使膝蓋與踝關(guān)節之間的隱靜脈更加明顯，可以在后腿膝蓋以上使用止血帶。在近尾側的皮膚表面可以找到隱靜脈。

針垂直于皮膚表面扎破血管。不要進(jìn)針過(guò)深，以免刺穿肌肉或碰到骨頭。血液會(huì )從入針處慢慢流出，用毛細采血管收集，并松開(kāi)止血帶。采血結束后，按壓傷口或使用止血劑（如硝酸銀）以止血，并將小鼠放回籠內。

將小鼠麻醉后仰臥于實(shí)驗臺面上并固定。用眼科彎鑷將小鼠舌頭拉出，可明顯看到小鼠舌下靜脈。

持采血針與舌面呈10°夾角插入舌下靜脈，見(jiàn)有回血緩慢抽取，直至采到所需血量。

該方法采血量( 0.2 ml至近全血量) 及采血次數( 1～8次/d) 可隨分析目的而變動(dòng),適用于人手少、動(dòng)物數量多、實(shí)驗時(shí)間緊以及藥代動(dòng)力學(xué)等需連續少量取血的研究中。但要求技術(shù)熟練, 方能得心應手。在一定時(shí)間內, 如果采血量和采血次數增加, 會(huì )使動(dòng)物引起一定的應激性反應或采血部位的傷害。

將動(dòng)物胸前區采血部位皮膚消毒, 于胸前正中線(xiàn)約第四肋骨水平先用注射器針頭沿水平方向刺入皮膚。

再向頸靜脈所在位置沿皮下進(jìn)針, 針頭到達頸靜脈所在位置時(shí), 輕引注射器內筒使之呈負壓, 再使注射器與胸部表面成30°～ 40°角向頸靜脈刺入, 此時(shí)注射器應與頸靜脈走行方向相一致。

在刺入過(guò)程中, 速度要緩慢, 刺入的深度約5 mm, 在試探性緩慢刺入或拔出時(shí), 如有血液自動(dòng)流入注射器內筒, 說(shuō)明針尖已在頸靜脈內, 此時(shí)固定好動(dòng)物, 勿使注射器針頭移動(dòng)。

也可將采血針抵在動(dòng)物胸骨上以便于操作, 小心抽引注射器內筒, 待血液足夠時(shí), 拔出采血針, 用干棉球按壓止血。

一個(gè)人可以用微型手電筒或LED小夜燈等緊貼尾靜脈，在燈光的照射下，尾靜脈會(huì )被很清晰的顯示，提高成功率。

固定器（自行設計）小鼠，將尾巴拉直，用酒精棉球擦拭尾巴或者用熱水或者熱毛巾焐熱尾巴（熱水浸泡鼠尾）, 使尾部靜脈擴張。

用左邊手的食指，中指，無(wú)名指及大拇指將小鼠尾巴固定。

握住1ml 注射器（選用29G的針頭為宜）前面0.1ml處，右手小指搭在拽著(zhù)鼠尾的左手拇指處斜15°角緩慢進(jìn)針（鼠尾遠端約1/3的位置）。適當增加內壓看有無(wú)回血，若有回血則緩慢抽取所需血量，棉簽按壓止血。

將小鼠麻醉后，平躺放置在實(shí)驗臺面上，中指、食指固定小鼠尾部。

用刀片輕劃小鼠尾側靜脈或尾正中動(dòng)脈。待血液流出后，用移液槍吸取血液。取血完畢后，棉簽按壓止血。

優(yōu)點(diǎn)：采血法取血量大、不易溶血，血液質(zhì)量較好，適用于多項目檢測，且不損傷器官，有利于病理組織學(xué)檢查。

缺點(diǎn)：操作比較復雜，應注意掌握適當的麻醉深度，防止心跳驟停，同時(shí)防止大鼠躁動(dòng)。本方法造成的出血速度快，易造成出血性的心臟停跳，故要防止采血過(guò)程中出血。且本方法采血過(guò)程中如多次采血不宜拔出針頭。

將大鼠腹腔注射麻醉劑后，直到身體全身變軟，把大鼠仰臥固定在手術(shù)臺上，背部可以放置—粗試管以充分暴露腹主動(dòng)脈。

常規消毒后用手術(shù)剪刀沿腹正中線(xiàn)剪開(kāi)腹腔，用小鑷子輕輕扒開(kāi)血管周?chē)?，再用棉球把覆蓋在血管的多余脂肪擦干凈，直到清晰看清血管為止（用棉球可以盡量減少小血管破裂出血，影響接下來(lái)進(jìn)針時(shí)的視線(xiàn)）。

找腹主動(dòng)脈（粉）在脊柱上面，腹腔靜脈血管（比腹主動(dòng)脈粗，黑）旁，找到后，術(shù)者先固定血管，盡可避免血管移位，左手拇指和食指固定住血管兩旁的脂肪及其它臟器，無(wú)名指按住血管進(jìn)針點(diǎn)的上端，降低血壓，可以避免血液濺出。

右手持穿刺針，針尖斜面朝下，入針角度約（小于）30度左右，朝向心端方向刺入，深度以5m左右為宜，進(jìn)針后可以用止血夾夾住針頭，可以避免麻醉不夠掙扎導致血管被針頭戳破。

取完血后，用棉球輕壓針眼處，快速拔出針頭，可以反復采集多管的血樣進(jìn)行不同項目的測試（一般體重200~300g大鼠可采血液8~10mL）。

優(yōu)點(diǎn)：取血快，血液不易凝集，心區面積大,進(jìn)針準確性較高,可一針見(jiàn)血,且采血量能滿(mǎn)足大量試驗需要。

缺點(diǎn)：采血成功率較小，死亡率高，心臟損傷較大，難以迅速愈合，不利于短期連續采血，亦無(wú)法確定是靜脈血還是動(dòng)脈血。

一般有3種心臟采血的姿勢：1、托起小鼠軀干使身體垂直與地面。身體直立以防止心臟的偏轉或胸部的扭曲。使用1毫升注射器和22g針頭。將針頭從胸部中央向下5mm處插入，深度5-10mm，將注射器與胸部保持25-30度；2、使小鼠仰臥固定，剪去胸前區被毛，皮膚消毒后，用左手食指在左側第3～4肋間觸摸到心搏處，右手持帶有4~5號針頭的注射器，選擇心搏最強處穿刺；3、使小鼠側臥，垂直于胸壁插入針頭。

如果血液沒(méi)有立刻進(jìn)入注射器，可以輕輕抽空針管，產(chǎn)生一個(gè)真空區。

當注射器中出現血液時(shí)，將針管保持靜止并輕輕地抽拉活塞芯桿，以獲得更多的血液。一般可以采到0.8-1.0ml血液。

用左手拇指、食指和中指抓取小鼠的頸部頭皮，小指和無(wú)名指固定尾巴，輕壓需要摘取的眼部皮膚，使眼球充血突出。

用眼科剪剪去小鼠的胡須，防止血從胡須處順流而下引起溶血。

用眼科彎鑷夾取眼球并快速摘取，并使血液從眼眶內流入0.5mlEP管中。待小鼠取血完畢后，斷頸處死。

用左手拇指和食指以背部較緊的捏住小鼠頸部皮膚，并作小鼠頭部朝下的姿勢。

右手用剪刀猛剪鼠頸，約1/2-4/5的頸部剪斷，讓血滴入容器中。